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Experimento de laboratorio: enumeración de leucocitos

Experimento de laboratorio: enumeración de leucocitos



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Las siguientes imágenes se obtuvieron en un experimento para enumerar leucocitos en una muestra de sangre utilizando la cámara de recuento de Neubauer.

La siguiente solución se preparó y se añadió a la cámara de Neubauer y se observó bajo un microscopio compuesto:

100 microlitros de ácido acético (reactivo ácido para hemolizar los glóbulos rojos) + 50 microlitros de colorante de Leishman + 1-2 gotas de sangre.

¿Son estos objetos circulares transparentes granulares en las imágenes los leucocitos? En caso afirmativo, ¿se incluyen también los más pequeños? No puedo decidir cuáles tomar en cuenta.

Además, ¿este recuento es normal (por ejemplo, conté alrededor de 250 (excluyendo los muy pequeños y aplicando la regla del margen) en el cuadro superior izquierdo de la cuadrícula (Imagen 3))?


Primero, me aseguraría de que todos los glóbulos rojos desaparecieran con solo realizar una inspección visual. Lo que debería quedar son sus glóbulos blancos y plaquetas en este punto, y las plaquetas son pequeñas, por lo que probablemente pueda contar cualquier cosa entre 5 µm y 25 µm. Entonces, para mí, eso incluiría básicamente todo lo que puedo ver menos el fondo o los escombros.

Entonces, el problema ahora es cuantificar su conteo. Debería saber cuál es el volumen de su sangre, y este es el motivo: lo que está haciendo con un hemocitómetro es contar #células en un volumen determinado, pero también diluido su sangre entera con 150µL antes de contar. Entonces, por ejemplo, si una gota es ~ 60µL, y la diluyó con 150µL su factor de dilución es 3.5, y es importante porque su ecuación de densidad celular es

Sin embargo, como referencia, normalmente terminas con 4 a 10 millones de leucocitos por ml de sangre.


Procedimiento

    Obtener una suspensión uniforme de células.: Siga el protocolo de tipsinización / neutralización de tripsina para el tipo de célula específico. Coloque la suspensión celular en un tubo de centrífuga cónico de tamaño adecuado. Para obtener un recuento de células exacto, es necesaria una suspensión uniforme que contenga células individuales. Pipetee la suspensión celular hacia arriba y hacia abajo en el tubo 5-7 veces usando una pipeta con un diámetro pequeño (pipeta de 5 ml o 10 ml). Para las células descongeladas de la crioconservación (en 1 ml de medio de crioconservación), pipetear hacia arriba y hacia abajo de 7 a 10 veces con una pipeta de 1 ml.

Para una determinación precisa, el número total de células por encima de 1 mm 2 debe estar entre 15 y 50. Si el número de células por 1 mm 2 excede 50, diluya la muestra y vuelva a contar. Si el número de células por 1 mm 2 es inferior a 15, utilice una muestra menos diluida. Si no hay disponibles muestras menos diluidas, cuente las células en ambos lados del hemocitómetro (áreas de 8 x 1 mm 2).

Mantenga un recuento separado de células viables y no viables. Si más del 25% de las células no son viables, el cultivo no se mantiene en la cantidad adecuada de medio. Vuelva a incubar el cultivo y ajuste el volumen del medio de acuerdo con la confluencia de las células y la apariencia del medio. Incluya celdas en la parte superior e izquierda tocando la línea media. Las celdas que tocan la línea media en la parte inferior y derecha no se cuentan.

I. El azul tripán es la "tinción vital" excluida de las células vivas.
ii. Las células vivas aparecen incoloras y brillantes (refráctiles) bajo contraste de fase.
iii. Las células muertas se tiñen de azul y no son refráctiles.

  • % Viabilidad celular = [Células viables totales (no teñidas) / Células totales (viables + muertas)] X 100.
  • Células viables / ml = Recuento medio de células viables por cuadrado x Factor de dilución x 10 4 /
  • Recuento medio de células viables por cuadrado = Número total de células viables en 4 cuadrados / 4.
  • Factor de dilución = Volumen total (Volumen de muestra + Volumen de líquido diluyente) / Volumen de muestra.
  • Células viables totales / Muestra = Células viables / ml x El volumen original de líquido del que se extrajo la muestra de células.
  • Volumen de medio necesario = (Número de células necesarias / Número total de células viables) x 1000.

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Laboratorio de sangre periférica

La sangre proporciona un mecanismo por el cual los nutrientes, gases y desechos pueden transportarse por todo el cuerpo. Consiste en una serie de células suspendidas en un medio fluido conocido como plasma. Las células de la sangre consisten en eritrocitos, plaquetas y leucocitos o glóbulos blancos. Los eritrocitos son responsables de transportar gases,

Las células de la sangre son importantes porque son una población fácilmente accesible cuya morfología, bioquímica y ecología pueden dar indicaciones del estado general de un paciente o pistas para el diagnóstico de la enfermedad. Por esta razón, el hemograma completo (CBC) y el recuento diferencial de glóbulos blancos se utilizan de forma rutinaria en la medicina clínica. Es muy importante poder reconocer las células sanguíneas normales y distinguir las células patológicas de las variantes normales.

La identificación de células sanguíneas se basa principalmente en observaciones de la presencia o ausencia de un núcleo y gránulos citoplasmáticos. Otras características útiles son el tamaño celular, el tamaño y la forma del núcleo, el aspecto de la cromatina y la tinción citoplásmica. El cuadro al final de esta sección explica qué buscar en el esfuerzo por identificar las células componentes de un frotis de sangre.

Eritrocitos

Los eritrocitos o glóbulos rojos son, con mucho, el tipo de célula predominante en el frotis de sangre. Aparecen como discos bicóncavos de forma y tamaño uniformes (7,2 micrones) que carecen de orgánulos y gránulos. Los glóbulos rojos tienen un aspecto rosado característico debido a su alto contenido de hemoglobina. El área central pálida de cada glóbulo rojo se debe a la concavidad del disco. También se ven en esta diapositiva varias plaquetas, que desempeñan un papel crucial en la cascada de coagulación de la sangre.

Neutrófilos

Los neutrófilos son, con mucho, los leucocitos más numerosos. Se caracterizan por un núcleo que está segmentado en tres a cinco lóbulos que están unidos por hebras delgadas. El citoplasma de los neutrófilos se tiñe de un rosa pálido. Sus gránulos primarios (más grandes) contienen hidrolasas ácidas y proteínas catiónicas, y sus gránulos secundarios (más pequeños) contienen una variedad de sustancias antimicrobianas que se utilizan para destruir las bacterias que fagocitan durante la respuesta inflamatoria aguda.

Eosinófilos

Los eosinófilos son más grandes que los neutrófilos y se distinguen por un núcleo bilobulado y gránulos grandes de color rojo o naranja de tamaño uniforme. Estos gránulos contienen la principal proteína básica, que se libera para matar organismos demasiado grandes para fagocitar, como parásitos y helmintos (gusanos). Los eosinófilos constituyen entre el 1 y el 3% del total de glóbulos blancos en la sangre humana.

Basófilos

Los basófilos son de tamaño intermedio entre los neutrófilos y los eosinófilos y tienen núcleos simples o bilobulados. Contienen muchos gránulos gruesos de color púrpura que pueden variar en tamaño o forma. Estos gránulos contienen histamina, que se libera para provocar una respuesta vasoactiva en las reacciones de hipersensibilidad, y heparina, que es un anticoagulante. Los basófilos no son fagocíticos.

Linfocitos

Los linfocitos pueden parecer pequeños o grandes. El linfocito pequeño tiene aproximadamente el mismo tamaño que un eritrocito y contiene un núcleo oscuro con un borde delgado de citoplasma circundante. Los linfocitos no contienen gránulos visibles. Los linfocitos pequeños están inactivos. Los linfocitos grandes (10-15 micrones) contienen más citoplasma que los linfocitos pequeños y el citoplasma permanece basófilo. Los linfocitos grandes son células B o T activas. No es posible distinguir los linfocitos B y T a este nivel de aumento.

Monocitos

Los monocitos son más grandes que los linfocitos y los granulocitos y contienen núcleos que a menudo contienen una hendidura en un lado. El citoplasma contiene pequeños gránulos con enzimas lisosomales y peroxidasa. Los monocitos son células fagocíticas que son importantes en la respuesta inflamatoria.


Abstracto

La vacunación con vectores virales o adyuvantes puede inducir cambios tempranos en los leucocitos de sangre periférica circulantes que predicen una respuesta inmunitaria protectora. En este estudio, definimos un Panel Trucount (TP1) de tinción de anticuerpos de sangre total de 11 colores para enumerar y fenotipar las principales poblaciones de leucocitos en un entorno de ensayo de medicina experimental de vacunas humanas. TP1 se puede preparar hasta 8 semanas antes de su uso, lo que permite la preparación a granel en un laboratorio central y la distribución a los centros clínicos. Las células en sangre completa deben teñirse dentro de las 4 h posteriores a la extracción para detectar con precisión las principales poblaciones de células. La tinción de células con TP1 seguida de almacenamiento y envío a -80 ° C a un laboratorio central tiene poco o ningún efecto sobre las concentraciones de células observadas. También presentamos datos de un ensayo clínico multicéntrico de vacunas contra el VIH obtenidos utilizando el protocolo de ensayo TP1 optimizado y demostramos que los datos producidos se correlacionan con precisión con los datos del recuento sanguíneo completo (CBC). En conjunto, estos datos indican que el ensayo de panel TP1 optimizado se puede utilizar en un entorno de ensayo clínico multicéntrico para aumentar nuestra comprensión de las respuestas sistémicas a la vacunación o la enfermedad.


3 RESULTADOS

Intentamos eliminar la posible ambigüedad técnica de las puertas estableciendo puertas robustas. Sin embargo, la separación de algunas poblaciones causó problemas, principalmente después del NoL con respecto a las parcelas FS y SS, es decir, el método NoL condujo a una distribución inesperadamente amplia de FS y SS (Figura S1). En gran parte, esto puede deberse a la formación transitoria de doblete en la suspensión de células rica en eritrocitos, porque FS y SS disminuyeron después de la aplicación de una puerta de discriminación de doblete. Por lo tanto, también incluimos linfocitos con señales SS altas en las mediciones de muestras sin lisis. Dado que esto podría interferir con nuestro intento de usar NoL como referencia, siempre verificamos la media de todos los métodos como un segundo método de referencia. Sin embargo, como está predefinido en nuestro plan de análisis, todos los resultados principales a continuación se refieren al método NoL como referencia. Los resultados utilizando la media de los métodos condujeron a resultados similares (ver más abajo).

La SS difirió entre las preparaciones y aumentó en las muestras tratadas con FacsL. Este fenómeno fue muy prominente para los granulocitos eosinófilos (granulocitos después de la sustracción de neutrófilos, es decir, células SS alta / CD16 con CD45 ligeramente por encima de la población de neutrófilos). Estas células se desplazan por encima del rango de medición de SS superior en las preparaciones de FacsL y, por lo tanto, parecen faltar en los gráficos que incluyen SS (Figura S1), pero se muestran en otros gráficos como una población separada con tinción de fondo alta (por ejemplo, gráfico de CD3 / CD8 en la Figura 1).

Dos mediciones tuvieron que descartarse del análisis debido a una preparación fallida o anomalías en el recuento de células individuales. Decidimos incluir 12 muestras que se desvían muy levemente de nuestras condiciones previas de distribución fisiológica definidas anteriormente.

Los cálculos de control "Suma de Leuko" estaban por debajo del 98% en 5 mediciones. En los 5 casos, las células faltantes agrupadas en la "región de las Bermudas" baja CD45 dim / SS, por lo tanto, son probablemente basófilos y / o células blásticas y biológicamente plausibles.

3.1 Completitud de la lisis de glóbulos rojos

La eficiencia de lisis fue significativamente diferente entre los métodos de lisis (PAG & lt .0001). La lisis más eficiente de RBC se logró con VersaL (mediana de Leuko 96,92% de todos los eventos) y NH4Cl (96,85%), seguidos de cerca por VersaFix (93,55%). En contraste, observamos una lisis de RBC menos confiable con QuickL (79.05%) y FacsL (59.06%), ambos últimos métodos significativamente inferiores en comparación con cada uno de los primeros tres métodos (PAG & lt .0001 para todas las comparaciones, Figura 2).

3.2 Principales poblaciones de leucocitos

La influencia de la estrategia de lisis sobre la enumeración de los tamaños de la población de leucocitos fue variable en diferentes muestras con una amplia superposición y algunos valores atípicos. Sin embargo, algunas diferencias fueron claramente significativas. La Figura 3 muestra el tamaño relativo de la población como porcentaje de Leuko. El número relativo de granulocitos fue significativamente mayor después de la lisis con FacsL, lo que dio lugar a una sobreestimación del 5% en comparación con las muestras no lisadas (PAG & lt .0001). Se encontraron resultados similares para los neutrófilos (+ 7%). Los resultados de los monocitos fueron similares usando la definición que incluye u omite CD14. A continuación, solo se muestran los resultados con CD14. Los recuentos de monocitos se subestimaron con QuickL (−11%, PAG & lt .0001), mientras que se midieron porcentajes comparables (todos por encima de NoL, por lo que una diferencia aún mayor con QuickL) se midieron utilizando FacsL, VersaL y VersaFix. La población total de linfocitos se subestimó considerablemente (-19%, PAG & lt .0001) utilizando FacsL. Se encontraron resultados similares si se usaba como referencia la media de todos los ajustes en lugar de NoL (ver Figura S2), con la excepción de la fracción de monocitos, que se midió algo más pequeña con NoL en comparación con el promedio de todos los métodos.

3.3 Subpoblaciones de linfocitos

La Figura 4 muestra el tamaño relativo de todos los subconjuntos de linfocitos (B, T, Tc, Th, Tdn, T-CD56 + y NK) como porcentaje de todos los linfocitos. Para las células B, T-CD56 + y Tdn, observamos recuentos de células absolutos muy bajos en algunas muestras, lo que llevó a la exclusión parcial de las mediciones de 9 muestras diferentes (células B: 5 muestras, T-CD56 +: 3 muestras y Tdn : 4 muestras). Los recuentos de células B mostraron valores significativamente más bajos después de FacsL (−8%, PAG = .0002). Para las células T-CD56 + y NK, obtuvimos valores significativamente más altos después de FacsL (+ 15%, PAG & lt .0001 + 11%, PAG = .006). Después de VersaFix, notamos valores un 8% más bajos dentro del compartimento T-CD56 + (PAG = .0019). Las otras subpoblaciones de linfocitos como fracción de linfocitos totales se midieron con solo pequeñas diferencias entre las estrategias de lisis. Nuevamente, se obtuvieron resultados similares usando la media de todos los métodos como referencia (Figura S3).


Enumeración de las principales poblaciones de leucocitos de sangre periférica para ensayos clínicos multicéntricos utilizando un ensayo de fenotipado de sangre total.

La criopreservación de leucocitos de sangre periférica se usa ampliamente para preservar células para evaluaciones de respuesta inmune en ensayos clínicos y ofrece muchas ventajas para facilitar y estandarizar las evaluaciones inmunológicas, pero se han observado efectos perjudiciales de este proceso en algunos subconjuntos de células, como granulocitos, células B y células dendríticas (1-3). El análisis de leucocitos frescos proporciona una imagen más precisa del estado in vivo de las células, pero a menudo es difícil de realizar en el contexto de grandes ensayos clínicos. Los análisis de células frescas dependen de los compromisos de los voluntarios y de los plazos y, si requieren mucho tiempo, su aplicación puede resultar poco práctica debido a las horas de trabajo que se requieren del personal de laboratorio. Además, cuando los ensayos se llevan a cabo en varios centros, es posible que los laboratorios con los recursos y la capacitación necesarios para realizar los ensayos no estén ubicados lo suficientemente cerca de los sitios clínicos. Para abordar estos problemas, hemos desarrollado un panel de tinción de anticuerpos de 11 colores que se puede usar con tubos Trucount (Becton Dickinson San Jose, CA) para fenotipar y enumerar las principales poblaciones de leucocitos dentro de la sangre periférica, lo que produce un tipo de célula específico más robusto. información que los ensayos como un hemograma completo (CBC) o ensayos con paneles disponibles comercialmente diseñados para tubos Trucount que tiñen solo para unos pocos tipos de células. El procedimiento de tinción es simple, requiere solo 100 µl de sangre entera fresca y toma aproximadamente 45 minutos, lo que lo hace factible para los laboratorios de procesamiento de sangre estándar. Está adaptado de la hoja de datos técnicos del tubo BD Trucount (versión 8/2010). El cóctel de anticuerpos de tinción se puede preparar por adelantado a granel en un laboratorio de análisis central y enviarse a los laboratorios de procesamiento del sitio. Los tubos teñidos pueden fijarse y congelarse para su envío al laboratorio de análisis central para el análisis de citometría de flujo multicolor. Los datos generados a partir de este panel de tinción se pueden utilizar para realizar un seguimiento de los cambios en las concentraciones de leucocitos a lo largo del tiempo en relación con la intervención y podrían desarrollarse más fácilmente para evaluar los estados de activación de tipos celulares específicos de interés. En este informe, demostramos el procedimiento utilizado por los técnicos de laboratorio de procesamiento de sangre para realizar la tinción en sangre completa fresca y los pasos para analizar estas muestras teñidas en un laboratorio de análisis central que respalda un ensayo clínico multicéntrico. El video detalla el procedimiento tal como se realiza en el contexto de una extracción de sangre de un ensayo clínico en la Red de Ensayos de Vacunas contra el VIH (HVTN).


Límite de tiempo: 45 días

¡Perdón! Actualmente el período de inscripción está cerrado. Por favor, revise luego.

Descripción completa del curso


Manpreet Singh, doctorado

Manpreet Singh es nativo de Punjab, un estado en la parte norte de la India, y en el momento en que se desarrolló el curso era profesor asistente de microbiología de alimentos en el Departamento de Ciencias Avícolas de la Universidad de Auburn. Desde entonces, ocupó un puesto en la Universidad de Purdue. Es miembro de la Asociación Internacional de Protección de Alimentos (IAFP), el Instituto de Tecnólogos de Alimentos (IFT) y la Sociedad Americana de Microbiología (ASM).

Este curso de laboratorio está diseñado para permitir que los participantes aprendan y realicen experimentos con diversos alimentos y microorganismos presentes en las fuentes alimentarias y brinda capacitación en técnicas microbiológicas básicas. Se proporciona una descripción detallada, paso a paso, del aislamiento de microorganismos indicadores y patógenos comunes que causan brotes de origen alimentario. El laboratorio está diseñado como un curso de nivel 1 con cinco módulos. Se requiere una formación en biología, con la finalización de un curso de biología básica como "biología de organismos", para el nivel 1, y la finalización del nivel 1 es un requisito previo para el nivel 2. Los módulos del curso brindan información sobre varios métodos de tinción, la importancia de técnicas asépticas, composición y preparación de medios microbiológicos y varios métodos de muestreo


Fondo

¿Alguna vez ha oído hablar de algo que se denomina "sangre vital"? Bueno, eso es porque la sangre es responsable de mantener vivas y en crecimiento casi todas las células de nuestro cuerpo. Nuestra sangre está formada por cuatro componentes principales: glóbulos blancos, glóbulos rojos, plaquetas y plasma, cada uno de los cuales tiene fines específicos. Sin embargo, antes de entrar en la ciencia de la sangre, ¡es útil aprender un poco sobre los sistemas circulatorios! ¡Entonces, aprovechemos esta oportunidad para aprender un poco sobre la cucaracha también!

Los seres humanos tenemos un sistema circulatorio cerrado que suministra oxígeno, nutrientes, hormonas y otros elementos esenciales a todo nuestro cuerpo. Como sugiere su nombre, un sistema "cerrado" significa que toda nuestra sangre fluye a través de arterias, venas y capilares. Esto significa que nuestra sangre no solo está dando vueltas dentro de nosotros, sino que nuestro corazón bombea sangre con fuerza a través de nuestros vasos sanguíneos. Cuando sufre de vasos sanguíneos rotos, como un corte o raspado, esto se llama hemorragia. Una capacidad importante de la sangre de nuestro cuerpo es su capacidad para coagularse o para crear un bloqueo que impida que la sangre tenga hemorragias, lo que le da al cuerpo tiempo para regenerar las células y curar la lesión. Es posible que también escuche que se hace referencia al sistema circulatorio como sistema cardiovascular. El sistema cardiovascular es solo un término más específico, que se refiere principalmente al corazón (cardio) y los vasos sanguíneos (vascular).

¡Ahora, a la sangre! Recuerde, nuestra sangre está formada por cuatro componentes: glóbulos rojos y blancos, plaquetas y plasma.

las células rojas de la sangre son responsables de mantenernos vivos! Nuestro corazón bombea nuestra sangre, nuestros pulmones oxigenan los glóbulos rojos y los glóbulos rojos transfieren el oxígeno a los tejidos celulares a través de un proceso llamado respiración celular. El oxígeno es importante para nosotros porque permite a nuestras células metabolizar (transformar) los nutrientes en energía que puede impulsar el movimiento y el crecimiento de nuestro cuerpo.

células blancas de la sangre son el sistema de defensa de nuestro cuerpo. Son nuestra segunda línea de defensa contra las enfermedades (la primera son las barreras externas como la piel), destruyendo los "patógenos" (material que causa la enfermedad) que pueden dañarnos o enfermarnos. Hay una variedad de tipos de glóbulos blancos en nuestro cuerpo que se especializan en atacar diferentes tipos de patógenos. Con diferentes especializaciones vienen diferentes enfoques para eliminar los patógenos. Los glóbulos blancos pueden "comer" patógenos (envuelven al patógeno y luego usan enzimas para descomponerlo), liberan anticuerpos para destruirlos o liberan antitoxinas para combatir los efectos de ciertos patógenos.

Plaquetas son responsables de la capacidad de coagulación de nuestra sangre. Las plaquetas son células diminutas, aproximadamente una quinta parte del diámetro de un glóbulo rojo. Cuando tiene una hemorragia, comienzan a pegarse en el sitio del daño hasta que han creado un bloqueo físico, o un tapón, evitando que se escape más sangre. Luego, una vez que el cuerpo ha curado el daño, el coágulo es absorbido nuevamente por el cuerpo.

Plasma es el líquido que permite el movimiento de las células a través de su sistema circulatorio. Es principalmente agua, pero también se compone de proteínas, azúcares, electrolitos y otros elementos esenciales. El plasma constituye un poco más del 50% de su sangre, lo que lo convierte en el componente más abundante de su sangre.

Con nuestros otros experimentos, hemos aprendido que las cucarachas tienen un sistema nervioso similar al de los humanos, pero ¿esto es cierto con el sistema circulatorio? Desafortunadamente, para aquellos de nosotros que nos gusta disfrutar de la magnificencia de las similitudes entre especies en la naturaleza, la cucaracha, como todos los insectos, no tiene un sistema circulatorio como el nuestro. En cambio, tienen un sistema circulatorio abierto, con cavidades corporales llenas de hemolinfa (la versión de insectos de la sangre). Te alegrará saber que las cucarachas tienen corazón y, relativamente hablando, ¡es incluso más grande que el nuestro! El corazón de la cucaracha utiliza 13 cámaras, en comparación con las cuatro, para bombear sangre por todo el cuerpo de la cucaracha. Otra diferencia importante es que su hemolinfa (sangre) cumple diferentes funciones, en particular, no es responsable de transportar oxígeno como lo es la nuestra. En lugar de oxigenar la sangre con los pulmones y luego dispersarla por todo el cuerpo como el nuestro, las cucarachas "respiran por la piel", de hecho, ¡ni siquiera tienen pulmones! En cambio, tienen un sistema de tubos, llamados tráqueas, que suministran oxígeno a todo el cuerpo. Las tráqueas se oxigenan a través de poros especiales en la piel de la cucaracha. Esto es lo que nos permite anestesiar a las cucarachas para los experimentos de SpikerBox y RoboRoach en agua helada; dado que no respiran como nosotros, no pueden ahogarse al sumergirse en agua (sin embargo, pueden morir si están completamente sumergidas y no pueden reoxigenarse a través de la piel durante un período prolongado de tiempo). La hemolinfa también es importante para el sistema inmunológico de las cucarachas debido a las células llamadas hemocitos. Al igual que los glóbulos blancos, los hemocitos son responsables de proteger a la cucaracha de los patógenos.

Para este experimento, tomaremos muestras de sangre humana y de cucarachas para verla bajo el accesorio de alta potencia del Roachscope.

Tenga en cuenta: estas preparaciones requieren el uso de agujas que están clasificadas como "punzantes" por la FDA (lancetas para dedos y jeringas con aguja hipodérmica). Estos se pueden comprar sin receta en la mayoría de las farmacias. Estas agujas son AFILADO y debe tener mucho cuidado al trabajar con ellos; nunca los deje sentados sin la cubierta protectora puesta. Cuando esté listo para deshacerse de ellos, siga el protocolo de eliminación de objetos punzantes adecuado. También puede llevar sus objetos punzantes a una clínica local y preguntar si pueden desecharlos allí.


Información adicional

Contribuciones de los autores

JB diseñó el proyecto general, realizó la adquisición de muestras, la obtención de imágenes, el análisis y redactó la mayor parte del texto.

BW realizó análisis de datos y estadísticas, y ayudó en la preparación del manuscrito.

Automóvil club británico realizó seccionamiento de tumores y recuento celular manual y estadísticas.

JF se comunicó con médicos y patólogos para obtener muestras, dirigió el estudio y asistió en la preparación del manuscrito.


Ver el vídeo: Glóbulos blancos Neutrófilos fagocitando metales pesados (Agosto 2022).